Полноценная версия статьи с визуальными материалами доступна для скачивания по кнопке выше.

В данной статье представлен клинический случай, демонстрирующий преимущество лечения на основе микробиологических посевов по сравнению с эмпирическим назначением антибиотиков резерва, основанный на опыте работы с внутрибольничными инфекциями в конкретном лечебном учреждении.

В декабре 2025 года на прием поступила беспородная домашняя кошка в возрасте 5 лет, весом 3,5 кг. Владельцы обратились с жалобами на анорексию. При УЗИ выявлены признаки гастроэнтероколита и панкреатита, а также следовое количество свободной жидкости между петлями кишечника. В общем анализе крови наблюдался лейкоцитоз со сдвигом влево. Было принято решение госпитализировать животное в отделение интенсивной терапии для восстановления водно-электролитного баланса, проведения мультимодальной анальгезии и дальнейшей диагностики. Животное вакцинировано двукратно в течение жизни, кастрировано, ранее обращений в клинику и госпитализаций не было, что может свидетельствовать о неотягощенном антибиотикоанамнезе.

В связи со стойкой анорексией была установлена эзофагостома. На фоне дробного энтерального питания и других мер интенсивной терапии отмечена положительная динамика моторики желудочно-кишечного тракта.

На 2-е сутки после установки зонда появились гнойные выделения с неприятным запахом и незначительная крепитация в области установки эзофагостомы. Несмотря на увеличение кратности обработок, на третьи сутки была выявлена область некроза до 1 см вентральнее от эзофагостомы. Было принято решение об удалении зонда.

На 4-е сутки при осмотре обнаружены обширные карманы крепитации вентро-каудально с переходом на область левой лопатки до 7-го межреберья.

В клинике, где проводилась госпитализация, ранее наблюдались животные с подтвержденными Staphylococcus aureus и Klebsiella pneumoniae, чувствительными к амикацину.

Лечение

На момент госпитализации пациенту был назначен амоксициллин с клавулановой кислотой в дозировке 20 мг/кг 2 раза в сутки внутривенно в связи с наличием острого лейкоцитоза и профилактикой транслокации бактерий на фоне атонии желудочно-кишечного тракта.

На 2-е сутки после госпитализации, после обнаружения гнойных выделений в области установки эзофагостомы кратность введения антимикробного препарата была увеличена до 3 раз в сутки, а также выполнен экспресс-посев. На 4-е сутки на фоне нарастания лейкоцитоза и подозрения на септический процесс пациент переведен на внутривенную инфузию с постоянной скоростью (ИПС) амоксициллина клавуланата (75 мг/кг/сут) для обеспечения концентрации препарата в крови до получения результатов посева. Препарат переразводили каждые 3 часа, температура в помещении не превышала 20 °C для обеспечения стабильности клавулановой кислоты в инфузионном растворе.

На фоне ИПС амоксициллина клавуланата и прочих мер интенсивной терапии в течение 48 часов наступила положительная динамика: улучшились витальные показатели и состояние сознания пациента.

По результатам экспресс-посева гнойного отделяемого из области эзофагостомы была выявлена бактерия Escherichia coli в титре 10⁵ КОЕ, чувствительная к амоксициллину клавуланату в высокой экспозиции и резистентная к амикацину.

После стабилизации состояния животное было переведено на пероральную таблетированную форму Клавуксицина® в дозировке 30 мг/кг 2 раза в сутки общим курсом 21 день с момента первичного введения.

Обсуждение

Несмотря на общую доступность применения антимикробных средств у животных-компаньонов в Российской Федерации, следует помнить о необходимости проведения микробиологических исследований, даже с учетом увеличения финансовой нагрузки на владельцев. Использование антибиотиков резерва «вслепую» грозит не только появлением устойчивых внутрибольничных инфекций, но также может подвергнуть владельцев и медицинский персонал перекрестному заражению устойчивыми микроорганизмами.

В настоящее время появляются лаборатории, проводящие экспресс-посевы с одновременным определением чувствительности. Срок выполнения таких исследований составляет до 3 суток с момента поступления материала, что крайне актуально для животных, находящихся в тяжелом и критическом состоянии.

Осложненные инфекции, ассоциированные с наличием питательных трубок и зондов, в обязательном порядке должны включать удаление основного источника — эзофагостомы. Важно понимать, что наличие биопленки на зонде меняет подход врача-клинициста к лечению, поскольку назначение только антимикробных препаратов, в том числе резерва, может быть неэффективным при бактериальных биопленках. Как правило, биопленка формируется на 1–3-и сутки с момента установки зонда: свободноплавающие бактерии адгезируются на трубке, появляется матрикс и формируется полимикробное сообщество. В силу своих свойств бактерии, обитающие в биопленках, крайне устойчивы как к антимикробным препаратам, так и к естественному фагоцитозу.

В клинической практике допустимо эмпирическое назначение антибиотиков первого выбора, однако необходимо помнить об общих принципах рациональной антибиотикотерапии, основанных на международных рекомендациях (ISCAID, ACVIM, WSAVA). В данном случае антимикробная терапия изначально была назначена по причине нейтрофильного сдвига и подозрения на транслокацию бактерий на фоне атонии желудочно-кишечного тракта. Повышение дозировки и переход на инфузию с постоянной скоростью связаны преимущественно с пониженной концентрацией препарата в тканях кожи и подкожно-жировой клетчатки, а также с увеличением зоны крепитации.

Ни одна из предполагаемых клиницистами бактерий не является продуцентом газа, который мог бы вызвать крепитацию в области эзофагостомы. В подобных случаях следует подозревать наличие облигатных анаэробов внутри раневого канала либо в биопленке на самой трубке. Данные микроорганизмы крайне сложно выделить при посеве, так как стандартный способ забора биоматериала тампоном может привести к гибели облигатных анаэробов при контакте с воздухом и, как следствие, к ложноотрицательному результату.

Касательно роста карманов крепитации и появления повреждений кожных покровов на теле животного, данный симптом, вероятно, связан с ожогом от активного обогрева электрическими грелками. Термическое повреждение тканей могло привести к локальному ослаблению иммунитета, что способствовало росту облигатных анаэробов и увеличению зоны крепитации.

Представленный клинический случай демонстрирует необходимость проведения микробиологических исследований для лечения осложненных инфекций. В данном случае эмпирическое назначение амикацина как наиболее вероятного антагониста в отношении рецидивирующих внутрибольничных патогенов могло не только не помочь пациенту, но и ухудшить общий прогноз.