Производственный опыт формирования перекрестной защиты против классических и вариантных полевых штаммов инфекционного бронхита кур

Скачать в формате pdf

Глотов С.В., Хошафян Л.С.


Журнал "Птицеводство", 03.2023

Сергей Владимирович Глотов, Лусеген Саркисович Хошафян ГК ВИК 

Введение. Инфекционный бронхит кур (ИБК) – контагиозное заболевание, возбудитель которого – одноцепочечный РНК содержащий вирус, относящийся к семейству Coronaviridae. Впервые инфекционный бронхит наблюдали в 1931 г. в штате Северная Дакота (США) [5].

Вирус ИБК реплицируется в эпителиальных клетках органов дыхательной системы, почках, органах яйцеобразования и кишечнике. Заражение возможно в любом возрасте [1]. Вирус ИБК неустойчив в окружающей среде; формалин, четвертичные аммониевые соединения (ЧАСы) и большинство других дезинфектантов убивают его; нагревание, изменение рН (<3, >8), воздействие УФ-лучей снижают выживаемость вируса [4].

В настоящее время выделено около 100 вариантных штаммов данного вируса. Такое разнообразие штаммов является результатом точечных мутаций участка гена S1 и генетической рекомбинации [5].

Согласно результатам исследований, проведенных в Европе в 2011 г., доминирующим вариантным штаммом вируса ИБК, наряду с 793b, является штамм QX, который стремительно распространяется и на территории других стран [3]. Появление данного штамма в России впервые зафиксировано в 2001 г. В настоящее время отмечено распространение штамма QX на всей территории России [7].

Наряду со штаммами Массачусетс (далее Mass.) и 793b, штамм 55 QX занимает лидирующую позицию в патогенезе ИБК (регистрируется в 30-40% случаев обнаружения вируса ИБК в ПЦР-пробах). Он характеризуется высокой патогенностью и вызывает заболевание у кур всех типов продуктивности и в любом возрасте. Заболевание характеризуется следующими клиническими симптомами и патологоанатомическими изменениями:

• поражение респираторной системы: конъюнктивиты, экссудат в носовой полости, хрипы, чихание;

• поражение почек и мочеточников с отложением мочекислых солей (нефрозонефритный синдром);

• поражение железистого желудка (провентрикулит);

• у взрослой птицы регистрируют поражение репродуктивных органов, с образованием кист яйцевода; при раннем заражении приводит к недоразвитию органов яйцеобразования и, как следствие, получается «ложная» несушка.

При инфицировании штаммом QX смертность у цыплят-бройлеров может превышать 10%, а у взрослой птицы происходит снижение яичной продуктивности (до 50%).

Использование классического штамма Mass. Н120 для профилактики полевой инфекции, вызванной вариантным изолятом, в частности, штаммом QX, не вызывает формирования перекрестного иммунитета и защиты поголовья от проявления заболевания [6]. Следовательно, при профилактике ИБК нужно уделять особое внимание штамму QX и широкой перекрестной защите против вариантных и классических штаммов.

Для формирования защиты против штамма QX возможно применять комбинацию вакцинных штаммов, относящихся к разным генетическим группам, создавая защиту за счет перекрестного иммунитета [2].

Иммунизация вакциной Пулвак IB Primer (имеющей в своем составе вариантный штамм D274) обеспечивает раннюю защиту от классических штаммов, а также формирует широкий перекрестный иммунитет [7], и в комбинации со штаммом 793b защищает птицу от патогенного штамма QX на более чем 85%.

Целью опыта была оценка получения перекрестной защиты цыплят-бройлеров против классических и вариантных полевых штаммов ИБК, а также анализ производственных показателей по законченным партиям выращивания цыплят-бройлеров при вакцинации Пулвак IB Primer и коммерческой вакциной с серотипом 793b.

Материал и методика исследования. Практический опыт по вакцинации бройлеров против ИБК вакциной Пулвак IB Primer в комбинации с вакциной, содержащей штамм 793b, был проведен на птицефабрике Уральского федерального округа.

В течение 2021-2022 гг. на поголовье цыплят-бройлеров разного возраста кросса Росс-308 были проведены молекулярные исследования методом полимеразной цепной реакции в реальном времени (RT-PCR) для мониторинга ИБК (контроль репликации вакцинных штаммов, наличие полевых штаммов). Для обнаружения генетического материала вируса ИБК были взяты пробы (мазки-отпечатки) из трахеи и почек бройлеров. Пробы отбирались у 10 голов из одного корпуса в возрастах бройлеров 10, 18, 20, 27, 30 и 34 дней жизни. Пробы отбирали на FTA-card.

На основании полученных данных лабораторных исследований провели производственный опыт по вакцинации бройлеров против ИБК. Были сформированы по принципу аналогов две группы: контрольная и опытная. Контрольную группу (519142 гол.) иммунизировали в инкубаторе вакциной, содержащей штамм Mass., и ревакцинировали в возрасте 8 дней вакциной, содержащей штамм 793b. Опытную группу цыплятбройлеров (522426 гол.) иммунизировали в инкубаторе вакциной Пулвак IB Primer и ревакцинировали в возрасте 8 дней вакциной, содержащей штамм 793b. 

В период проведения производственного опыта были отобраны пробы на FTA-card из опытной и контрольной групп птицы возраста 18, 20 и 30 дней. Пробы были исследованы методом RT-PCR для обнаружения геномов ИБК.

Все молекулярно-генетические исследования проводили в независимой ветеринарной лаборатории ООО «ЭниТест» (г. Москва) с использованием коммерческого набора Kylt IBV. В производственном опыте также определяли основные зоотехнические и экономические показатели эффективности выращивания бройлеров.

Результаты исследований и их обсуждение. В ходе предварительного исследования проб, отобранных от цыплят-бройлеров, были обнаружены штаммы, применяемые для вакцинации цыплят непосредственно на предприятии (штаммы Mass., 793b), и полевой штамм QX (гомологичный вакцинный штамм на предприятии не применялся). Результаты предварительных исследований приведены в табл. 1 и 2.

Как видно из табл. 1 и 2, ситуация с вирусом ИБК в период с августа 2021 по июль 2022 гг. на птицефабрике не изменилась, и у бройлеров по-прежнему обнаруживались как вакцинные штаммы, так и полевой вариантный штамм QX.

Однако после применения новой программы вакцинации в производственном опыте штамм QX уже не обнаруживался в опытной группе бройлеров, хотя обнаруживался в контрольной (табл. 3). Это говорит о формировании у бройлеров перекрестного иммунитета против ИБК, включая полевой штамм QX, при применении испытуемой программы вакцинации.

Оценка производственных показателей выращивания цыплятбройлеров в опытной и контрольной группах представлена в табл. 4. При одинаковой убойной массе в обеих группах сохранность бройлеров в опытной группе была выше, чем в контрольной, на 0,86%, а конверсия корма – ниже на 2 пункта; в результате выход живой массы с единицы площади пола птичника в опытной группе увеличился на 0,9 кг/м2, а европейский индекс продуктивности – на 9,1 пункта.

Выводы. Применяя в схеме вакцинации против ИБК комбинацию вакцинных штаммов, входящих в состав вакцины Пулвак IB Primer (Mass. + D274), и вакцину с серотипом 793b можно получить широкий перекрестный иммунитет против классических и вариантных полевых штаммов ИБК, в том числе штамма QX. Анализ производственных показателей выращивания цыплят-бройлеров показал, что в опытной группе, где использовали данную схему вакцинации, они были выше, чем в контрольной, где при вакцинации в инкубатории применяли вакцину, содержащую только штамм Mass.

Литература

1. Сергеев, В.А. Вирусы и вирусные вакцины / В.А. Сергеев, Е.А. Непоклонов, Т.И. Алипер. - М.: Библионика, 2007. - С. 430-444.

2. Овчинникова, Е.В. Генетическая характеристика полевых изолятов вируса инфекционного бронхита кур, выявленных в России / Е.В. Овчинникова, Ю.А. Бочков, Г.В. Батченко [и др.] // Труды Федерального центра охраны здоровья животных - 2007. - Т. 5. - С. 303-316.

3. Стокер, Л. Исследование распространенности инфекционного бронхита кур в Европе/ Л. Стокер, Ш. Ван Мер, С. Эндрюс, У. Вайменга // Рос. вет. ж-л. С.-х. животные. - 2014.- №2. - С. 20-21.

4. Бакулин, В.А. Болезни птиц / В.А. Бакулин. - СПб. 2006. - С. 99-106.

5. Болезни домашних и сельскохозяйственных птиц: в 3 ч.; под ред. Б.У. Кэлнека [и др.]. - М.: Аквариум, 2011. - Ч. 2. - С. 188-206.

6. Sun, C. Phylogenetic analysis of infectious bronchitis coronaviruses newly isolated in China, and pathogenicity and evaluation of protection induced by Massachusetts serotype H120 vaccine against QX-like strains / C. Sun, Z. Han, H. Ma, Q. Zhang, B. Yan, Y. Shao, J. Xu, X. Kong, S. Liu // Avian Pathol. - 2011. - V. 40. - No 1. - P. 43-54.

7. Ovchinnikova, E.V. Molecular characterization of infectious bronchitis virus isolates from Russia and neighbouring countries: identification of intertypic recombination in the S1 gene / E.V. Ovchinnikova, Y.A. Bochkov, L.O. Shcherbakova, Z.B. Nikonova, N.G. Zinyakov, N.P. Elatkin, N.S. Mudrak, A.V. Borisov, V.V. Drygin // Avian Pathol. - 2011. - V. 40. - No 5. - P. 507-514.